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PD-1/PD-L1 免疫治疗在肿瘤中的耐药机制和研究进展
来源 药学学报 ISSN 0513-4870,CN 11-2163/R
作者
严时佳，孙蕾，万国辉
中山大学药学院
摘要
程序性死亡受体 1 (programmed cell death protein 1, PD-1) 是一种重要的免疫抑制分子，其通过与细胞程序性死亡-配体1 (programmed cell death 1 ligand 1, PD-L1) 结合启动 T 细胞程序性死亡使肿瘤细胞获得免疫逃逸。
免疫检查点抑制剂通过阻断 PD-1 与 PD-L1 结合，重新激活患者自身的免疫细胞来杀伤肿瘤，进而治疗多种癌症。
随着美国 FDA 陆续批准抗 PD-1 单抗 nivolumab、pembrolizumab 和抗 PD-L1 单抗 atezolizumab 等免疫检查点抑制剂用于治疗黑色素瘤和进展期非小细胞肺癌等，癌症治疗迎来新曙光。
但是只有约 20%患者在接受治疗后获得了长期疗效，且多数患者后期耐药复发。
因此，确定有效的生物标记物和开发新靶点是当前提高患者免疫治疗响应率的重要任务。
本文就抗 PD-1/PD-L1 药物在肿瘤中的作用机制、预测生物标志物的发展获得性耐药的机制以及联合治疗的发展进行综述。
关键词
程序性死亡受体 1；细胞程序性死亡-配体 1；免疫治疗；耐药；生物标志物
| 正文 |
程序性死亡受体1 (programmed cell death protein 1, PD-1, 又称CD297) 是由Pdcd1 编码的 I 型跨膜蛋白，是 CD28 免疫球蛋白超家族的一员。
在多种免疫细胞中均有表达，包括 T 细胞、B 细胞和髓细胞，可抑制 T 细胞的激活、调节 CD8+ T 细胞的效应性[1]。
细胞程序性死亡-配体 1（programmed cell death 1 ligand 1, PD-L1, 又称 CD274、B7-H1) 是 B7 家族中一个负性 T 细胞共刺激分子，由人 9号染色体上基因编码，广泛表达于树突状细胞等抗原提呈细胞表面。
PD-L1 主要 由 IF-γ 诱导产生，通过与 PD-1 结合抑制 CD8+ T 细胞的增殖和活化。
有研究表明，PD-1 及其同源配体主要抑制炎症反应时周围组织 T 细胞的活性，并通过诱导活化的 T 细胞凋亡、促进 T 细胞衰竭、增强调节性 T 细胞的免疫抑制功能、抑制 T 细胞的增殖与活化和产生白介素 (interleukin-2，IL-2) 等方式调控自身免 疫，同时也介导了肿瘤的免疫逃逸[2,3]。
PD-1 表达于多种肿瘤组织中的肿瘤浸润型淋巴细胞，包括头颈部癌[4]、黑 色素瘤[5]和非小细胞肺癌 (non-small-cell lung cancer, NSCLC)[6]；PD-L1 也在多种恶性肿瘤中高表达，如 NSCLC 等。通过靶向 PD-1 和 PD-L1 的免疫治疗可以克服肿瘤环境的免疫抑制、重新激活患者自身的免疫细胞来杀伤肿瘤，进而治疗多种癌症。
目前，美国食品药品监督管理局 (FDA) 批准的免疫检查点抑制剂包括：PD-1 单抗 nivolumab (BMS)、pembrolizumab (Merck)，PD-L1 单抗 atezolizumab (Genentech)、avelumab (Emd Serono)、durvalumab (Astrazeneca)。
尽管肿瘤免疫治疗在一些患者身上取得了显著且持久的疗效，但 PD-1 或 PD-L1 治疗的患者响应率只有 20%~30%。
一方面，预测反应率的生物标志物研究的不足限制了临床患者治疗策略的有效性的提高；另一方面，由于机体免疫调节信号通路错综复杂，耐药成为免疫治疗发展的一大难题和挑战。
因此，发现更有效的预测生物标志物以及探究免疫治疗的内在机制和耐药机制是解决当前免疫治疗难题的重要任务。
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1
临床实验与生物标志物
两项有关 nivolumab 治疗癌症进展的耐药 NSCLC 患者的Ⅲ期临床试验 (CheckMate017, CheckMate057) 表明，鳞状或非鳞状非小细胞肺癌患者的总生存(overall survival, OS) 和无进展生存期 (progression-free survival, PFS) 在接受 nivolumab 治 疗 后 都 有 所 提 高 [7] 。
而有关 pembrolizumab 的 临 床 研 究 (Keynote010) 发现，PD-L1 表达大于 1% 的患者使用该单抗作为二线药物相较于化疗药的 OS 更高[8]；尤其是 PD-L1 表达大于 50% 的肝癌转移的继发性肺癌患者 (患者无 EGFR 激活或 ALK 突变且未接受治疗)，使用单抗药物治疗的 OS、PFS 和生存率远高于化疗组 (Keynote024)[9]。
此外，durvalumab 治疗Ⅲ期 非转移性 NSCLC 的临床试验也显示出良好的效果[10]。
随着 FDA 批准 nivolumab 等抗体作为肿瘤的一、二线治疗药物，寻找具有预测治疗反应意义的生物标志物已成为临床研究需要迫切解决的课题。
最近的两项 Meta 分析表明，肿瘤 PD-L1 表达与客观缓解率 (objective response rate, ORR) 和 PD-1/PD-L1 抑制因子之间存在相关性，提示研究者 PD-L1 有可能成为有效的 生物标志物。
Passiglia 等[11]分析了 7 项共 914 例患者的研究发现 PD-L1 阳性 NSCLC (免疫组化 >1% 染色) 患者的 ORR 明显高于 PD-L1 阴性的患者 (OR: 2.44; 95% 置信区间:1.61~3.68)。
Abdel-Rahman 等[12]的 Meta 分析包括了 12 项研究共 3 790 名患者，发现在 PD-1/PD-L1 抑制剂治疗的患者中，当 NSCLC 患者 PD-L1 表达超过 1% 时，ORR 比表达低于 1% 时有所改善 (OR: 2.18; 95% 置信区间:1.45~3.29; P = 0.000 2)。这些数据表明，当使用 PD-1/PD-L1 抑制剂治疗 NSCLC 时，具有超过 1% 的 PD-L1 表达的患者对 NSCLC 治疗的敏感性更高。
但是，目前尚不清楚肿瘤 PD-L1 的表达基线是否与临床治疗反应时间有关。
PD-L1 是一种可诱导的动态的生物标志物，因此与 EGFR 和 ALK 突变等更易于检测的肿瘤预测生物标志物有所不同；如果 PD-L1 表达因先天免疫抵抗而不是抗肿瘤免疫反应而短暂升高，那么阻断该抑制途径来对抗肿瘤可能是无效的。
另外，由于 PD-L1 的表达是动态的，受空间 (原发灶或转移灶) 和时间 (活检和后续治疗之间的间隔) 的影响，其表达水平也可能会发生变化，而活检样本只是肿瘤的快照，不能反映整个肿瘤微环境，因此通过组织学分析单个患者的数据将有助于确定 PD-L1 表达在 NSCLC 的预测作用。
目前 PD-L1 作为有效临床治疗生物标志物的研究还在完善中。
另一方面，免疫相关反应标准 (immune-related response criteria, ir-RC) 已被证明更适合用于免疫治疗药物的反应评价。
另外，McGranahan 等[13]发现，新抗原的异质性将影 响整体新抗原负担进而影响 PD-1/PD-L1 抑制的治疗结果。
Rizvi 等[14]研究也发现 pembrolizumab 的疗效与新抗原负荷即较高的非同义突变率相关——pembrolizumab 持久疗效的患者的候选新抗原负担明显高于无持久疗效的患者，而高候选新抗原负担与无进展生存期 (PFS) 改善相关 (14.5个月vs 3.5个月, P = 0.002)。
该研究还揭示了肿瘤突变负担与 PD-L1 表达之间的一些相关性。这说明肿瘤 PD-L1 表达水平与其他免疫生物标志物相结合的组合预测有望在未来进一步提高临床反应预测的准确性。
此外，一些新的潜在预测生物标志物也在研究中，如干扰素基因信号[15]、II 类主要组织相容性抗原[16]的表达、微生物组[17,18]和肿瘤浸润淋巴细胞[5]等。
未来，无论是根据目前已有预测生物标志物进行组合预测，还是发现更多新的潜在生物标志物，都有待更多的临床研究来确证。
2
PD-1/PD-L 抑制 T 细胞激活的机制
PD-1 介导免疫抑制的机制与多个细胞信号通路交叉相关。
PD-1 在持续抗原刺激，如持续感染或在肿瘤环境中呈高表达，抑制自体免疫功能。
PD-L1 与 PD-1结合后，通过募集磷酸酶如 SHP2 作用于 PD-1 蛋白结构域基于免疫受体酪氨酸的转换基序 (immunoreceptor tyrosine-based switch motif, ITSM) 磷酸化酪氨酸残基，使激酶去磷酸化，进而拮抗 TCR 与 CD28 发出的阳性信号，影响下游的 PI3K-AKT、RAS、ERK 等通路来抑制 T 细胞的激活[19]。
抗 PD-L1 治疗解救耗 竭的 CD8+ T 细胞是依赖于 CD28 信号传导，即 TCR (T cell receptor) 的参与[20]。
PD-1 通过抑制 ZAP70、PKCθ、PI3K-AKT 和 RAS 通路，使得激活型 T 细胞相关转录因子如 AP-1 (activator protein 1)、NFAT (nuclear factor of activated T cell)、NF-κB ( nuclear factor-κB) 受到抑制；另外，还通过增加 BATF (basic leucine zipper transcription factor ATF-like) 的表达，抑制 T 细胞功能[21]。
(图 1) PD-1 也可以抑制调节细胞的作用。
研究发现，T 滤泡辅助细胞 (Tfr) 中的 PD-1 缺失可以增加其数量和抑制能力[22]，另外 PD-1 表达也会调控调节性 T 细胞 (regulatory cells, Treg) 的作用。
Treg 细胞是重要的免疫抑制性调节细胞，也是免疫抑制解除机制研究的热点[23]，其标志性分子之一 Foxp3 是一个转录调控因子，可以通过直接调控多种基因来调节 Treg 的活性。
研究表明， CD4+FOXP3+CXCR5− Treg 细胞上有 PD-1 表达，且 PD-1 调控 Foxp3 的稳定性，即 PD-1 通过下调天冬酰胺酰基内肽酶，维持 Foxp3 蛋白的表达水平来抑制淋巴细胞的活性。
另外，抗 PD-L1 单抗还可能通过抑制肿瘤的代谢途径起效。
在一项 PD-L1 抗体的研究中[24]，肿瘤细胞的糖酵解酶水平、AKT 磷酸化水平和葡萄糖摄取在治疗后明显降低，提示肿瘤代谢可能是免疫检查点抑制剂的重要机制之一。
有关免疫检查点抑制剂对肿瘤代谢的研究仍在开展中，有待新进展和新发现的报道。
3
耐药机制
3.1 肿瘤新抗原负荷
随着免疫检查点抑制剂的广泛应用，耐药成为免疫治疗发展的重大阻碍，如何克服患者的耐药成为亟待解决的问题。
Rizvi 等[14]对经过免疫治疗的 NSCLC患者进行研究，发现其新抗原负荷与疗效明显相关，提示新抗原负荷可能是理解耐药机制和克服耐药的关键。
在这项研究中，对 pembrolizumab 有持久疗效的NSCLC 患者体内的新抗原负荷明显高于无持久疗效的患者，且高新抗原负荷与 PFS 改善相关。
另外，McGranahan 等[13]也发现新抗原的异质性可能影响整体的新抗原负荷水平，进而影响 PD-1/PD-L1 单抗的治疗效果。
有关新抗原负荷与PD-1 耐药机制的关系还需更进一步的研究。
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3.2 肿瘤免疫与代谢
研究发现，在肾癌 (renal cell carcinoma, RCC) 中适应缺氧的因子水平显著上调，且葡萄糖醛酸化、营养物质转运相关分子过度表达，这可能是 RCC 对抗PD-1 治疗出现耐药的一种以满足细胞快速增殖的能量需求的代谢转变。
其中，以促进细胞清除毒素和外源性亲脂性化学物质为主要作用的 UGT1A6 是与抗PD-1 治疗耐药相关的单一高表达分子，且其他的 UGT1A 家族成员及构成化学防御的溶质载体的表达也上调，这可能导致以 UGT1A6 为代表的分子对肿瘤细 胞毒素的清除能力增强，使其更有利于与免疫系统的竞争[25]。
抗 PD-1 治疗耐药的 RCC 中代谢基因的过度表达反映了肿瘤通过竞争肿瘤微环境 (tumor microenvironment, TME) 内的葡萄糖等重要营养物质来限制肿瘤特异性浸润 T细胞的反应性，介导耐药的发生。
PD-1 能通过影响肿瘤浸润 T 细胞代谢、改变相关代谢信号通路基因的表达，进而诱导耐药的发生，提示可能在肿瘤代谢通路的研究中发现新的靶点，与抗PD-1 单抗联用将起到逆转耐药的治疗效果。
3.3 肿瘤微环境
3.3.1 肿瘤内在因子
临床研究表明，只有存在浸润性 T 细胞 (即一定 CD8+ T细胞浸润数量) 的患者，才对 PD-1 抗体治疗响应。
因此，针对浸润性 T 细胞的相关研究可能会对如何提高患者的治疗相应率有所启发。
有研究发现，细胞内在因子和致癌信号是影响浸润性 T 细胞水平的重要因素之一。
WNT 信号转导通路是动物中主要的生长调控途径，WNT 通路下游的 T 细胞因子 (TCF) 与 β-连环蛋白结合直接介导基因表达，促进细胞生长增殖。
该研究表明，WNT 通路中 β连环蛋白的过度表达与黑色素瘤中肿瘤特异性 T 细胞的浸润减少密切相关 [26]——β-连环蛋白基因的突变导致 β-连环蛋白异常的稳定，从而持续与核内受体TCF 结合促使一些基因的大量表达；CCL4 细胞因子表达的缺失导致了 APC 细胞特别是树突状细胞的缺失，进而抑制了肿瘤相关抗原激活 T 细胞的过程的发生。
3.3.2 炎症环境
转移性黑色素瘤的病变分析结果显示，间充质和抑制性炎症转 录表型与 PD-1 抑制剂耐药相关。CD8+ T 细胞在侵袭性肿瘤边缘的存在以及肿瘤中 PD-L1 高表达与治疗反应率正相关，说明存在持续的炎症反应，但也并不尽 然[27]，有待进一步确证。
3.4 表观遗传—DNA 甲基化
DNA甲基化和表观遗传因子组蛋白-赖氨酸N-甲基转移酶 (enhancer of zeste homolog 2, EZH2) 可能是介导黑色素瘤免疫治疗耐药的重要机制：DNA 甲基化阻碍了 IFN 的转录，而 E2H2 的激活影响了 RAS、PI3K、DNA 修复等信号通路进而增加 DNA 甲基化水平。
CpG 位点的 DNA 甲基化是癌症中最常见和最稳定的表观遗传变化。高甲基化通过抑制识别癌细胞所需的内源性干扰素反应来限制免疫检查点阻断免疫治疗；而整体低甲基化也会导致 PD-L1 和抑制性细胞因子 IL-6、VEGF 的表达增加，并伴有上皮-间质变化，可导致免疫抑制[28]。
目前，对这些相互对照的甲基化状态的驱动因素尚不清楚。
此外，DNA 甲基化在细胞毒性 T 细胞 (cytotoxic T cells) 耗竭中也起着关键作用，而这种耗竭与肿瘤进展有关。
因此，表观遗传药物与免疫检查点抑制剂的联合使用为突破耐药带来新的可能。
4
联合用药
4.1 联合靶向原癌基因
RAS 基因家族参与细胞内的信号传递，与肿瘤的发生密切相关，主要包括H-RAS、K-RAS 和 N-RAS 等。
当 K-RAS 基因突变时，该基因永久活化，不能产生正常的 RAS 蛋白，使得细胞内信号传导紊乱，细胞增殖失控而癌变。
在肿瘤临床治疗中发现，KRAS 的突变会增加肿瘤细胞的异质性，进而提高免疫检查点抑制剂的响应率，其机制为通过 IRF2-CXCL3-CXCR2 通路介导 T 细胞的数量增加，MDSC 细胞数量减少且 Treg 细胞数量的减少。
这提示，可以通过上调 IRF2表达或抑制 CXCR2 的表达克服 PD-1 药物耐药的问题。
CXCR1/2 的抑制剂 SX-682 的最新研究进展为联合用药增添了新的可能[29]。
原癌基因 RAS 的促癌机制研究发现，其可以通过稳定 PD-L1 mRNA 的稳定性—3’UTR 区的 AU 增加促进癌症发生。
因此，下调 RAS 基因下游的 MEK 表达进而降低 PD-L1 mRNA 的表达，也可能是减少肿瘤抑制、促进肿瘤免疫的一 种策略[30]。
在 pembrolizumab 治疗后黑色素瘤复发的患者研究中发现，患者 JAK1 和JAK2 的基因缺失和突变以及 B2M 突变会导致抗原呈递障碍、β-2-微球蛋白的缺失和 HLA 的障碍，进而导致 CD8 浸润的 T 细胞丢失 MHC I 且对 IFN-γ 的敏感 性降低[31]。
以上提示，可以通过靶向 JAK1、JAK2 以及 B2M 的突变逆转免疫检查点抑制剂的耐药。
在 NSCLC 的 PD-1 调控机制研究中，一个重要假设是先天免疫通过肿瘤细胞内的组成型致癌信号通路介导 PD-1 表达上调，其可能的机制为异常的 ALK 信号通过 STAT3 通路增加 PD-1 的表达[32]。
另外，表皮生长因子受体 (EGFR) 通 路及其突变的激活也与 NSCLC 患者的 PD-L1 表达上调相关[33]，说明采用免疫治疗与相关靶向药物的组合策略，如 ALK 或 EGFR 的靶向药物与抗 PD-1 药物联用可能会取得较好的抗癌效果。
但也有临床研究表明，EGFR 或 ALK 易位突变 的患者对抗 PD-1 治疗的响应率较低[34]。
因此，促癌基因与 PD-1 表达的调控组合策略能否增强抗癌效果取得临床治疗的突破还有待进一步的研究。
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4.2 联合靶向 Treg 细胞
靶向负性调节细胞 Treg 的癌症免疫治疗也是近年来关注的重点，但是 Treg的干预存在潜在的致命风险。
因此，增加靶向癌症细胞的选择性、减少正常组织自身免疫性疾病及炎症的发生是亟需攻克的难点。
Treg 细胞是抗肿瘤免疫的阻碍之一，Neuropilin-1 (Nrp1) 是维持肿瘤内 Treg稳定和功能必不可少的一部分，因此 Treg 限制性的 Nrp1 的缺失可能与肿瘤耐药的改善相关。
这提示确定 Nrp1 依赖性的基础和 Treg 关键调控因素将有助于改善 癌症的免疫治疗。
研究发现，一方面，Nrp1-表型的增加会诱导肿瘤内 IFN-γ 的生成，使 Treg 细胞的脆弱性增加，肿瘤免疫抑制减弱，抗肿瘤免疫增强，这与黑色素瘤和头颈鳞状细胞癌的预后相关；另一方面，IFN-γ 诱导的 Treg 细胞脆弱性是抗 PD-1 治疗的可能机制，即抗 PD-1 药物诱导大量 IFN-γ 产生。
在肿瘤缺氧酸性微环境中，Hif1α 表达的增加也会提高 Treg 细胞抑制的选择性，使得外周 Treg 细胞耐受，是另一个打破耐药的潜在靶点[35]。
4.3 联合靶向DNA损伤修复基因
研究表明，DNA 损伤修复基因 BRCA2 高突变的患者对 PD-1 抑制剂有较好的响应，生存率较高。
另外，错配修复缺陷 (mismatch repair deficiency, dMMR) 型 实体瘤对 PD-1 单抗 pembrolizumab 有较好的响应[36]。
ATR 蛋白是一种编码修复紫外线损伤的激酶，其缺失会导致细胞异常增殖；编码 ATR 蛋白基因的突变会改变肿瘤微环境从而诱发促炎环境、减少 T 细胞募 集，进而促进黑色素瘤的生长[37]。
因此，联合靶向 DNA 损伤修复基因，可能会改善耐药患者的情况。
从另一方面来说，累计更多突变也可能提高免疫治疗的响应率。因为一般来说，实体瘤的突变程度与免疫治疗的响应率密切相关，这可能是由于高突变的肿瘤细胞可以产生更多的新抗原，因此更容易被免疫系统识别“非己”身份，提高免疫系统的攻击性。
4.4 联合表观遗传和转录调控
在 DNA 甲基化抑制剂治疗的黑色素瘤患者中发现，低甲基化水平与 PD-L1 表达相关，提示表观遗传疗法和免疫疗法结合可能是克服耐药的有效途径[38]。
EZH2 的调控可调节 DNA 甲基化水平。
因此，可能采用的新策略为通过增强EZH2、HDAC、NDMT 的相关调控实现对肿瘤的控制，如组蛋白去甲基化酶 (LSD1) 的敲除，可减少重复元件的表达 (转录)，包括内源性逆转录病毒元件(ERV)[39]。
转录因子 YY1 会上调免疫检查点受体的表达水平，并下调长期激活且耗竭 的 T 细胞中 I 型细胞因子[40]。
PD-1、TIM3 和 LAG3 的上调以及 IL-2 (与组蛋白甲基转移酶 EZH2 协同) 和 IFN-γ 的下调的双信号重复持续刺激会使 YY1 上调，T 细胞耗竭增加，降低细胞毒性作用和减少 T 细胞增殖。
另外，调节效应 CD4+ T细胞分化的转录因子 (BACH2) 和编码淋巴细胞迁移相关的基因 (CCL3) 的高表达也可能与 PD-L1 的治疗耐受相关。
上述研究为耐药新靶点的发现提供新的可能。
4.5 多免疫靶点联合调控
研究发现，肿瘤突变导致的新抗原的丢失可能是抗 PD-1 耐药的关键。
有研究者提出，针对耐药肿瘤出现的新抗原可以用于开发特定的疫苗和过继性 T 细胞治疗中 T 细胞受体的设计[41]。
Koyama 等[42]使用两种完全免疫的肺腺癌小鼠模型，观察 PD-1 抗体结合 T 细胞中 Tim-3 的上调，并且在 PD-1 阻断失败后，用 Tim-3 阻断抗体治疗的小鼠具有明显提高的生存率，研究者们分析了来自人类患者的肿瘤标本证实这一发现——在抗 PD-1 治疗失败时，Tim-3 在阻断抗体结合 T 细胞方面也有类似的上调。
这提示假设在活检时测量多个免疫检查点就可以提供特定和个性化的免疫治疗策略，以更好地弥补免疫检查点表达的动态和多样性带来的治疗困难。
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潜在肿瘤标记物与肿瘤疗效预测
Rab27 蛋白是 Ras 家族中小 GTP 酶 Rab 家族一员，在囊泡的形成、运输、融合等过程中发挥着重要的作用，而在肿瘤的发生发展过程中，囊泡的运输及其胞吐作用起着非常重要的作用。
有研究表明，Rab27A、Rab27B 与肿瘤转移相关的临床特征关系密切，可以作为潜在的肿瘤标记物来判断预后；且 Rab27 与肿 瘤转移密切相关，有望成为潜在的肿瘤标记物[43]。
6
总结与展望
免疫治疗为癌症治疗带来了根本性的改变，其中，免疫检查点抑制剂凭借不良反应少、应用范围广的特点，为患者带了新的希望，发展前景广阔。
但仅有小部分患者能从治疗中收益的现状和耐药的发生为免疫治疗带来新的挑战。
目前，对于 PD-1/PD-L1 的作用机制和耐药机制依然不清晰，潜在肿瘤标记物与肿瘤疗效预测还有待进一步的研究。
在突破免疫治疗耐药的瓶颈方面，研究者们致力于新靶点的发现和联合治疗的探索，但临床上尚未得到令人满意的结果。
因此，未来研究对进一步优化免疫治疗策略、更加精准筛选出免疫治疗响应率高的患者以及耐药机制等问题的阐明都有待研究者们作进一步的努力。
参考文献
详见 药学学报 ISSN 0513-4870,CN 11-2163/R
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